自新冠mRNA疫苗成功上市以來，脂質納米粒（Lipid nanoparticle，LNP）已成為mRNA、siRNA、pDNA等核酸的優先遞送載體，廣泛用于mRNA疫苗及治療。微流控技術是目前制備核酸脂質納米粒常用的技術，包封率則是評價其制備效果的重要指標之一，下面就為大家介紹使用RiboGreen測定RNA-LNP包封率的方法。

1 RiboGreen檢測RNA-LNP包封率的原理

1.1RNA-LNP包封率（Encapsulationefficiency，EE）：包裹在脂質納米粒內部的RNA占RNA-LNP溶液中全部RNA的比例。

1.2 RiboGreen檢測RNA原理：RiboGreen是一種用于定量檢測溶液中RNA含量的超敏感熒光核酸染料，當RiboGreen熒光染料處于溶液狀態時，幾乎沒有熒光活性，與RNA結合時，其熒光活性將增加1000倍。RiboGreen-RNA復合物的熒光激發波長約500nm，發射波長約525nm，通過酶標儀，建立已知濃度RNA的標準曲線，即可得到樣品RNA濃度。

1.3 RiboGreen檢測包封率原理：分別測定LNP-RNA溶液中游離RNA濃度，以及用Triton-100破壞LNP結構后，溶液中全部的RNA濃度，兩者的差值就是包封在LNP內部的RNA濃度。通過以下公式即可計算得到包封率結果。

圖1核酸脂質納米顆粒的示意圖
 

2操作要點

2.1制備Buffer

1X TE Buffer：使用試劑盒中20X TE Buffer稀釋。

2% Triton-TE buffer：使用Triton-100與1X TE buffer以體積比1：50配制。

2.2添加RNA-LNP樣品至全黑96孔板

根據制備時RNA的量，可以大致計算需要稀釋的倍數。例如，已知 mRNA的原始質量或濃度，使用銘汰MicroFlow S進行RNA-LNP合成，根據稀釋、超濾等處理后的最終體積，即可估算大致總RNA濃度。同時，假設90%的包封率，即可估算游離RNA濃度。然后根據標曲的最高濃度計算需要稀釋的大致倍數。

這樣我們就可以使用1X TE buffer將RNA-LNP稀釋適合倍數以檢測LNP外游離RNA濃度，使用2% Triton-TE buffer將RNA-LNP稀釋適合倍數以檢測總RNA濃度，建議每項檢測至少兩個不同稀釋倍數。

最后，分別移取100 μL稀釋后的樣本，添加到全黑96孔板。

2.3標樣添加

一般直接使用試劑盒中100 μg/mL的RNA標樣，也可以使用與待測樣本類似的RNA標樣來建立標準曲線。可以先用1X TE buffer將原始標樣稀釋到工作濃度4 μg/mL，然后參考表1的體積比，配制為一定濃度梯度的標樣。分別移取各濃度的標樣100 μL，添加到全黑96孔板中。

注：*最終RNA濃度考慮了步驟2.4添加RiboGreen染料后的濃度
 

當RNA-LNP樣品及特定濃度的標樣添加到96孔板后，需要在37℃下避光孵育10 min，以使RNA-LNP在Triton buffer中充分裂解。

2.4 RiboGreen染料添加

把試劑盒中RiboGreen試劑，使用1X TE Buffer按照1：100的比例稀釋，例如需要2000 μL RiboGreen染料，可將20 μL的RiboGreen試劑添加到1980 μL的1X TE Buffer中。然后各取100 μL加入到已經加有樣品的96孔板中，37℃下避光孵育5min。

圖2 樣品添加
 

2.5酶標儀檢測

打開酶標儀，選擇熒光模式，激發光485nm，發射光528nm，讀數，記錄數據。

2.6數據處理及分析

    將每個樣本測得的熒光值減去空白熒光值，即可得到實際熒光值。根據標樣的熒光值和濃度梯度，繪制標準曲線，得到回歸方程。把樣品熒光值代入回歸方程，乘以稀釋倍數，即可得到樣本的RNA濃度。根據1.3中包封率公式計算得到包封率結果。

圖3 標準曲線

3 小結

準確的包封率測定對于評價RNA-LNP的包封效果至關重要，影響著后續細胞實驗和動物實驗的開展。RNA-LNP包封率測定一般使用商業化的試劑盒，雖然操作環節較多，但只要細心規范，操作起來也并不難，相信大家可以得到準確的實驗結果。

納米藥物制備系統

應用范圍：