細胞培養

一、操作規程：

1.實驗前,無菌室及無菌操作臺用紫外燈照射30-60分鐘滅菌,用70％酒精擦拭無菌操作臺面,并開啟無菌操作臺風機運轉10分鐘后,才可開始實驗操作.每次操作只處理一株細胞,以免造成細胞交叉污染.實驗結束后,將實驗物品帶出工作臺。如需要繼續進行下一個實驗,則用70％酒精擦拭無菌操作臺面,再讓無菌操作臺風機運轉10分鐘后,才可進行下一個實驗操作。

2.無菌操作工作區域應保持清潔與寬敞,必要物品,如試管架,移液器或吸管頭等可以暫時放置,其它實驗用品用完后應及時移出,以利氣體流通.實驗用品要用70％酒精擦拭后才能帶入無菌操作臺內。實驗操作應在操作臺中央無菌區域內進行,勿在邊緣非無菌區域操作。

3.小心取出無菌實驗用品,避免造成污染。切勿碰觸吸管與吸頭頭部或容器瓶口,不要在打開的容器正上方操作實驗。容器打開后,用手夾住瓶蓋并握住瓶身,傾斜約45°角取用,盡量勿將瓶蓋蓋口朝上放在臺面上。

4.工作人員應注意自身的安全,必須穿戴實驗衣與手套后才進行實驗。對于來自人源性或病毒感染的細胞株應特別小心,并選擇適當等級的無菌操作臺(至少兩級)。操作過程中,應避免引起氣溶膠的產生,小心有毒性試劑,例如DMSO及TPA等,并避免尖銳物品傷人等。

5.定期檢查下列項目：CO₂鋼瓶內的CO₂壓力；CO₂培養箱內的CO₂濃度,溫度,及水盤是否有污染；無菌操作臺內氣流壓力是否正常,定期更換紫外燈管及HEPA過濾器濾膜,預濾網（300小時/預濾網,3000小/HEPA)。

二、粉末細胞培養基的配制(以1 升為例)：

    細胞培養基通常須添加10％血清，因此粉末培養基之配制體積為900 ml，pH 為 7.2 - 7.4。NaHCO₃另外添加，若將NaHCO₃ 粉末直接加入液體培養基中會造成 pH 之誤差，或局部過堿。因此粉末培養基及NaHCO₃ 粉末應分別溶解后才混合，然后用CO₂ 氣體調整pH，而非用強酸(HCl)或強堿(NaOH)，因為氯離子對細胞生長可能有影響，且貯存時培養基的pH 易發生改變。

【試劑與設備】

1. 純水(milli-Q 水或二次至三次蒸餾水，水品質非常重要)

2. 粉末培養基 （1640、DMEM等）
3. NaHCO₃ (Sigma S-4019)
4. 電磁攪拌器
5. 無菌血清瓶
6. 0.22 微米無菌過濾膜
7. pH meter
8. 真空瓣
9. CO₂ 氣體
【配制步驟】
1. 取粉末培養基溶于700 ml milli-Q 水中，攪拌使其溶解。
2. 稱取適量之NaHCO₃粉末(數量依培養基種類而異)溶于200ml milli-Q 水中，攪拌使其溶解，然后通入CO₂氣體至飽和，約3-5 分鐘。
3. 將溶解且含飽和CO₂ 之NaHCO₃ 溶液加入溶解之液體培養基中混合。混后溶液之pH 應為7.2-7.4，除非pH 值偏差太大，否則不需用酸堿再調整之。若為太堿，可再通入CO₂ 氣體調整pH。培養基以真空幫助通過過濾膜時，pH 會升高0.1-0.2。
4. 以0.1 或0.2 mm 無菌過濾膜過濾滅菌，同時分裝至無菌容器中，標示培養基種類、日期、瓶號等，貯存于4℃ (血清亦可加入培養基中一起過濾)。
5. 配制之培養基配制須作生長試驗與污染測試。
【注意事項】

1. 液體培養基貯存于4 ℃冰箱，避免光照，實驗進行前放在37℃水槽中溫熱。