蛋白轉移的目的是將蛋白從凝膠上轉移到薄膜上，以便進一步進行抗體孵育等后續操作。 轉移電泳槽是蛋白免疫印跡中常用的實驗室儀器。然而，轉膜這個過程并不簡單，需要注意許多細節和技巧。
選擇合適的轉膜對于蛋白轉移非常重要。常用的轉膜膜有NC膜和PVDF膜。NC膜韌性較差，而PVDF膜韌性更好，同時蛋白結合能力也更強。然而，使用PVDF膜需要進行甲醇或乙醇活化，并且可能存在一定的熒光背景影響。根據需要進行熒光WB分析時需要注意選擇合適的轉膜膜。此外，對于分子量小于20kD的蛋白，建議選擇0.22μm甚至是0.1μm孔徑的膜，以防止轉移過程中蛋白的丟失。

轉膜有兩種主要的方式，一種是濕轉，另一種是半干轉。濕轉是一種傳統的方式，緩沖條件充足，適用于轉移各種分子量的蛋白，但時間較長。半干轉則更快，但不同的蛋白可能需要不同的轉膜條件，需要根據實際情況進行調整。
在轉膜過程中，操作細節也需要特別注意。
1.在切膠時要注意使用切膠板垂直向下切膠，保證膠邊整齊，避免裂開。在做“三明治”結構時，也可以借助切膠板來調整膠的位置，而不是直接用手操作。
2.在切膠時，需要將目的蛋白和內參切入膠中，但要注意保證安全距離，避免誤切目的蛋白。由于各種因素的影響，蛋白的分子量位置可能發生變化，因此建議切膠時留出一定的安全距離。
3.轉膜結構的制作也需要注意細節。在使用轉膜器材前，需要將海綿、濾紙、膜和轉膜夾等清洗干凈，避免結晶鹽離子對轉膜均勻度的干擾。在制作“三明治”結構時，趕走每一層的氣泡非常重要。可以使用專門的滾輪、離心管或尺子等工具仔細排除氣泡，但即使如此，轉完膜后可能仍會有氣泡出現。這些氣泡可能是無法肉眼可見的小氣泡，在轉膜過程中由于發熱而膨脹，從而導致氣泡的出現。
4.保證膠和膜的均勻緊密貼合也是非常重要的。有時候，在轉膜后發現膠上的蛋白條帶變得模糊不清，與轉膜前明顯不同。這可能是由于轉膜結構松散，膠與膜貼合不緊密或不均勻導致的。因此，及時更換轉膜濾紙和海綿，盡量保持膠和膜的均勻緊貼。此外，轉膜過程中產生的發熱也可能導致蛋白分子的不規則擴散運動，進一步影響貼膜的均勻性。
5.在設置轉膜條件時，要注意保持冰浴。由于轉膜過程會產生大量的熱量，實驗室中常常需要將轉移電泳槽放入冰中，以預先降低溫度。此外，對于常規的濕轉，一般使用200mA-300mA的電流，轉膜時間需要根據具體的蛋白分子量、膠的濃度和厚度進行調整。一般情況下，采用1.0mm厚、10%膠，300mA的電流轉膜1-1.5小時，即可基本完成250kD標記物的轉移。
6.為了檢驗轉膜效率，我們可以參考預染蛋白標記物。在轉膜后，可以使用麗春紅染色PVDF膜，但需要注意PVDF膜的靈敏度較低，因此即使沒有染出蛋白，也不代表蛋白沒有轉移到膜上，可以繼續進行下一步的內參檢測。同時，也可以使用考馬斯亮藍染色來觀察膠上蛋白殘留情況。

   在整個蛋白免疫印跡實驗中蛋白轉移電泳槽和轉膜技巧也很重要哦。只有熟練掌握這些技巧和經驗，能夠更好地進行蛋白轉移實驗，并取得更準確、可靠的結果。通過注意細節，選擇合適的轉膜膜和轉膜條件，我們可以更好地完成蛋白轉移實驗，并為科研工作提供有力支持。