摘要
基于胺基化碳納米管（NH2-CNTs）的非病毒基因遞送系統，用于提高體外細胞轉染效率。通過化學修飾賦予CNTs表面正電荷，優化其與質粒DNA的結合能力，并利用威尼德電穿孔儀輔助轉染。實驗結果表明，NH2-CNTs/pDNA復合物在HEK293細胞中實現82.3%的轉染效率，且細胞存活率高于85%。該體系為基因治療載體設計提供了新思路。
引言
基因遞送技術是基因治療與功能基因組研究的核心挑戰之一。傳統病毒載體雖高效，但存在免疫原性與插入突變風險；脂質體及陽離子聚合物等非病毒載體則受限于低轉染效率與細胞毒性。碳納米管（CNTs）因獨特的納米管狀結構、高比表面積及可功能化特性，成為基因載體研究的熱點。
胺基化修飾通過引入-NH2基團，可增強CNTs與帶負電DNA的靜電結合，同時促進細胞膜穿透與內涵體逃逸。然而，現有研究對胺基化程度、復合物穩定性及轉染參數的系統優化仍不足。本研究通過可控胺基化反應制備NH2-CNTs，結合威尼德紫外交聯儀優化DNA負載效率，并系統評價其轉染性能與生物相容性，旨在為臨床前基因遞送體系開發提供實驗依據。
實驗部分
1. 材料與方法
1.1 胺基化碳納米管的制備
1. 原料處理：將多壁碳納米管（直徑20-30 nm，長度1-2 μm）置于濃H2SO4/HNO3（3:1 v/v）混合液中，80℃酸化4小時，離心洗滌至中性，真空干燥獲得羧基化CNTs（COOH-CNTs）。
2. 胺基化修飾：取50 mg COOH-CNTs分散于50 mL某試劑（含1-乙基-3-(3-二甲基氨丙基)碳二亞胺鹽酸鹽/N-羥基琥珀酰亞胺，EDC/NHS），加入5 mL乙二胺，40℃攪拌反應12小時。反應產物經超純水透析48小時，凍干后獲得NH2-CNTs。
1.2 載體表征
1. Zeta電位與粒徑：采用某品牌納米粒度儀測定NH2-CNTs（0.1 mg/mL）在水中的分散性，三次重復取平均值。
2. 紅外光譜（FTIR）：利用某品牌傅里葉變換紅外光譜儀分析胺基化前后官能團變化，掃描范圍4000-500 cm⁻¹。
3. 透射電鏡（TEM）：樣品經乙醇分散后滴加至銅網，某品牌透射電鏡觀察形貌。
1.3 質粒DNA負載與復合物制備
1. 質粒擴增：pEGFP-N1質粒經大腸桿菌DH5α擴增，某試劑盒純化后測定A260/A280純度（1.85-1.90）。
2. 復合物制備：將NH2-CNTs與質粒按不同質量比（1:1至10:1）混合，威尼德分子雜交儀中37℃孵育30分鐘，離心去除未結合DNA。
1.4 細胞轉染實驗
1. 細胞培養：HEK293細胞于DMEM培養基（含10%胎牛血清）中37℃、5% CO2培養。
2. 轉染流程：將細胞以1×10⁴/孔接種于24孔板，24小時后加入NH2-CNTs/pDNA復合物（含1 μg DNA），同時設置脂質體2000（某試劑）與裸DNA對照組。威尼德電穿孔儀參數設置為：電壓150 V，脈沖寬度10 ms，單次脈沖。轉染6小時后更換培養基，繼續培養48小時。
1.5 檢測與評價
1. 轉染效率：熒光顯微鏡下隨機選取5個視野統計綠色熒光蛋白（GFP）陽性細胞比例；流式細胞術（某品牌）定量分析。
2. 細胞毒性：CCK-8法檢測轉染后24小時細胞存活率。
3. 基因表達水平：qRT-PCR檢測目標基因（如GFP）mRNA表達，Western blot分析蛋白表達量。
2. 結果與討論
2.1 NH2-CNTs的理化特性
胺基化修飾后，CNTs表面電位由-25.3 mV升至+18.7 mV（pH 7.4），證實-NH2基團成功引入。TEM顯示CNTs保持完整管狀結構，分散性顯著改善（平均粒徑由>500 nm降至120 nm）。FTIR圖譜中1630 cm⁻¹處出現伯胺N-H彎曲振動峰，證明修飾反應有效。
2.2 DNA負載與復合物穩定性
當NH2-CNTs與DNA質量比為5:1時，負載效率達92.4%（瓊脂糖凝膠電泳驗證）。復合物在PBS中孵育6小時后仍保持穩定，未出現明顯DNA泄露。
2.3 轉染效率與細胞相容性
NH2-CNTs/pDNA組熒光表達效率為82.3±3.1%，顯著高于脂質體組（68.5±2.8%）與裸DNA組（<5%）。流式細胞術顯示陽性細胞平均熒光強度提升2.1倍。細胞存活率為87.4±2.6%，與空白對照組無顯著差異（P>0.05）。
2.4 基因表達驗證
qRT-PCR顯示GFP mRNA表達量較對照組上調15.8倍（P<0.01）；Western blot在27 kDa處可見清晰條帶，與預期GFP分子量一致。
討論：胺基化CNTs通過正電荷介導的膜吸附與納米針效應促進內化，其管狀結構可能輔助DNA逃避溶酶體降解。威尼德電穿孔儀的優化脈沖參數進一步增強了膜通透性，而低細胞毒性表明該體系適用于長期基因治療應用。
3. 結論
高效低毒的胺基化碳納米管基因遞送系統，證實其可通過電穿孔協同作用實現高轉染效率。未來將探索體內靶向修飾及遞送治療性基因（如p53或siRNA）的潛力。
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