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細胞死亡的新途徑泛凋亡 (PANopotosis)詳述

瀏覽次數:1435 發布日期:2024-1-30  來源:本站 僅供參考,謝絕轉載,否則責任自負

在所有提出的程序性細胞死亡 (PCD) 形式中,細胞焦亡、細胞凋亡和壞死性凋亡是最明確的,其復雜的分子機制負責細胞死亡的啟動、轉導和執行[1]。但實際上這三種途徑之間存在復雜的串擾。例如在無菌損傷和感染性疾病(例如甲型流感病毒 IAV 感染)中,研究人員觀察到所有三種 PCD 途徑的生化標記物均被激活[1]。

2019 年,美國學者 Malireddi 將這種具有焦亡、凋亡和壞死性凋亡特征的新型死亡方式命名為泛凋亡,并提出先天性免疫傳感器 ZBP1 和 TAK1 激酶在泛凋亡小體復合物組裝的調控中發揮重要作用[2]


 Tips:
泛凋亡(PANoptosis) 是由特定觸發器激活并 PANoptosome 復合物調節的炎癥性 PCD 途徑,其綜合了細胞焦亡、細胞凋亡和/或壞死性凋亡的關鍵特征,這也是 PANoptosis 術語中 “P” “A” 和 “N” 的來源,但其不能被細胞焦亡、凋亡和壞死性凋亡中任意一種死亡方式單獨表征[1]

 

圖 1. 程序性細胞死亡的研究時間表和特征[1]
細胞死亡對于機體正常發育和抵抗病原體入侵至關重要,是宿主應對病原感染的一種防御手段。研究發現,IAV 感染后和 TAK1 活性喪失后會發生泛凋亡。此外,多種病原體如病毒、細菌、真菌,甚至寄生蟲,以及其他非感染性因素如腫瘤中的細胞因子,都可能引發宿主細胞的泛凋亡 (表 1)[3]。
 
表 1. 可誘導巨噬細胞焦亡、凋亡和壞死的病原體[3]



多種蛋白質可以形成調節 PCD 的多蛋白復合物,其基于各種蛋白質結構域之間的相互作用,可分為三類:傳感結構域、組裝結構域和催化結構域[2]。 

 泛凋亡小體: PANoptosome   
泛凋亡受到上游感受器和分子信號的級聯調控,這些傳感器和級聯信號組裝成一種多聚體復合物,即泛凋亡小體 (PANoptosome)。PANoptosome 及其上游的感受器不僅是下游分子的激活平臺,也是 3 種 PCD 途徑的啟動“總開關”[4][5]。
PANoptosome 小體作為一種分子支架,允許參與焦亡、細胞凋亡和/或壞死性凋亡的關鍵分子進行耦聯和結合[1]。傳感器蛋白在感知到病原體成分后,會介導 RIPK3、RIPK1、CASP8、FADD等蛋白組裝成 PANoptosome 復合體,從而誘導 PANoptosis[2][6]。
構成 PANoptosome 小體的蛋白質通常可分為三類:(1) ZBP1 和 NLRP3 作為假定的 PAMP 和 DAMP 傳感器,(2) ASC 和 FADD 作為適配器,以及 (3) RIPK1、RIPK3 、CASP1 和 CASP8 作為催化效應器[2]

圖 2. PANoptosis 和 PANoptosome 形成[1]
那么上游感受器如何特異性識別病原微生物感染以及這些成分之間相互作用的呢?其實這個的具體機制目前還是未知的。迄今為止,已經明確的泛凋亡上游分子有三種,分別是 ZBP1、RIPK1 和 AIM2,它們可以感受特定刺激并觸發泛凋亡小體的組裝,形成三種具有不同傳感器和調節因子的泛凋亡小體,即 ZBP1-PANoptosomes、AIM2-PANoptosomes 和 RIPK1-PANoptosomes。此外,PANoptosome 的激活也會受到 TAK1、PSTPIP2、SHARPIN、HOIP、HOIL-1 和 A20 的抑制[6]


圖 3. 泛凋亡小體及其通路[4]


 Tips:
(1) ZBP1 泛凋亡小體:Z-DNA 結合蛋白 1 (ZBP1) 是一種先天免疫受體,被鑒定為甲型流感病毒(Influenza A virus,IAV)的感受器和 IAV 感染期間細胞死亡的主要調節因子。在 IAV 刺激下,ZBP1 作為特異的感受器被激活,進而觸發 PANoptosome 的組裝[7][8]。ZBP1-PANoptosis 形成后,可以啟動由焦亡、凋亡和壞死性凋亡成分組成的泛凋亡,最終導致溶解性炎癥細胞死亡,其特征是 Caspase-1、Caspase-3、Caspase-8 的激活和 MLKL 的磷酸化[9]。
(2) RIPK1 泛凋亡小體:RIPK1 介導的泛凋亡小體主要由 RIPK1、ASC、Caspase-1、Caspase-8 和死亡相關結構域蛋白(fas-associated protein with death domain,FADD)構成,最早由 Malireddi 教授團隊提出。該團隊還發現 TAK1 可作為 RIPK1-PANoptosome 的調控主開關,因為 TAK1 基因的缺失或者功能失活可以觸發 RIPK1-PANoptosome 的組裝。然而,后續研究發現,TAK1 的缺乏同樣可以誘導 RIPK1 非依賴的泛凋亡通路的激活,后者主要由 RIPK3-MLKL 介導。
(3) AIM2 泛凋亡小體:其組成分子包括 AIM2、ZBP1、pyrin、ASC、Caspase-1、Caspase-8、RIPK1、RIPK3 和 FADD[10]。AIM2 炎性小體可感知雙鏈 DNA,AIM2 調節先天免疫傳感器 Pyrin 和 ZBP1 來驅動炎癥信號傳導和炎癥細胞泛凋亡,在人類的正常發育、傳染性疾病、炎癥和腫瘤方面發揮重要作用。



說了這么多,這種 “三合一” 的復雜細胞死亡方式,又該如何研究及檢測的呢?

首先咱們來說檢測,由于泛凋亡綜合了細胞焦亡、細胞凋亡和/或壞死性凋亡的關鍵特征,因此在進行相關檢測時三方面缺一不可!
之前小 M 也為大家整理過相關的檢測方法,那么本期僅做整理,不再詳述。


 Tips:

泛凋亡檢測方法及指標!

(1) 觀察細胞形態:細胞焦亡引起細胞質腫脹和膜破裂;凋亡主要形態學特征包括染色質固縮、DNA 片段化、細胞膜起泡、細胞皺縮、凋亡小體的形成等。
(2) 檢測不同 PCD 的關鍵蛋白:焦亡相關:Caspase-1、Caspase-3、Gasdermins、AIM2/Pyrin/NLRP3 等;凋亡相關:Caspase-3、Caspase-7、Caspase-8、PARP、Bax/Bcl 等;壞死性凋亡相關:MLKL、RIPK1、RIPK3、ZBP1 等。
(3) 其他指標檢測:Annexin V-FITC 和 PI 聯合染色;TUNEL 法;JC-1 檢測;ELISA 檢測炎癥因子的釋放;免疫印跡、流式等技術檢測炎性小體 NLRP3 的表達和 Caspase-1 的活化情況。


  文獻案例解讀(IF=39.3):
近期,Jin-Fei Lin 等人發現磷酸化的 NFS1 可通過預防 PANoptosis 以削弱結直腸癌的 Oxaliplatin 敏感性[11]

作者使用基于體內代謝酶基因的 (CRISPR)-Cas9 文庫篩選,發現 NFS1 的缺失顯著增強了 CRC 細胞對奧沙利鉑的敏感性。體外和體內結果表明,NFS1 缺陷與 Oxaliplatin 協同作用,通過增加細胞內活性氧 (ROS) 水平,引發泛凋亡。


圖 4. 磷酸化的 NFS1 通過降低 ROS 水平來減弱鉑基化學敏感性,從而防止 PANoptosis[11]


為了研究發生的細胞死亡類型,使用常見細胞死亡途徑的多種抑制劑并結合光鏡觀察細胞形態、YP1/PI 染色、流式檢測細胞死亡等進行檢測。結果表明,焦亡 (GSDME) 抑制劑 Disulfiram 和自噬抑制劑 3-methyladenine 無顯著作用,而凋亡抑制劑 Z-VAD-FMK 、壞死性凋亡抑制劑 Necrostatin-1 、鐵死亡抑制劑 Ferrostatin-1 、焦亡 (GSDME) 抑制劑 Ac-DMPD/DMLD-CMK 逆轉(但不能完全恢復)Oxaliplatin 治療下由 NFS1 缺乏引起的細胞活力降低和細胞毒性增強 (圖 5)。

圖 5. Oxaliplatin 聯合多種抑制劑的細胞活力及毒性測定[11]。 

a-b: 對照和 NFS1 敲低 HCT116 細胞的細胞活力 (a) 和細胞毒性 (b) 評估; c-d: 對照和 NFS1 敲低 DLD1 細胞活力 (c) 和細胞毒性 (d) 評估。

 

為了進一步證實 PANoptosis 的發生,作者發現 NFS1 敲低聯合 Oxaliplatin 治療顯著增加了死亡細胞的數量,包括指示細胞凋亡或壞死性凋亡的 YP1 陽性細胞和指示細胞壞死性凋亡、細胞焦亡或鐵死亡的 PI 陽性細胞 (圖 6: 左圖, a-b 和右圖 a-b)。

對 HCT116 細胞的分析還表明,聯合組中從質膜出現的大氣泡數量明顯高于陰性對照組、NFS1 敲低組和 Oxaliplatin 治療組,這表明細胞焦亡的發生 (圖 6: 左圖, a)。此外,NFS1 耗竭后進行 Oxaliplatin 治療定量增加了早期/晚期凋亡細胞的數量,并顯著減少了活細胞的數量 (圖 6: 左圖, c-d 和右圖 c-d)。此外,在 NFS1 敲低組和 Oxaliplatin 治療組中檢測到的脂質 ROS 含量高于對照組。這種增加在聯合組中更為明顯,表明鐵死亡的發生 (圖 6: 左圖, e 和右圖 e-f)。因此,這些數據表明 NFS1 缺陷與 Oxaliplatin 聯合有助于 PANoptosis 的激活。

圖 6. NFS1 缺陷與 Oxaliplatin 治療協同作用,誘導 PANoptosis[11]。 

(左圖): a. 對照中可能發生凋亡或壞死性凋亡的 YP1+細胞(綠色)和可能發生凋亡、壞死性凋亡、細胞焦亡或鐵死亡的 PI+細胞(紅色)以及用 Oxaliplatin 處理的 NFS1 敲低 HCT116 細胞。底部顯示為明場,紅色箭頭表示從質膜中出現的大氣泡; b. 對 (a) 中的 YP1+ 和 PI+ 細胞進行定量。c-d: 流式細胞術 (c) 和采用膜聯蛋白 V/PI 染色的定量分析 (d),在對照和用 PBS 或 Oxaliplatin 處理的 NFS1 敲低 DLD1 細胞中評估活細胞 (Annexin V- /PI-)、早期凋亡細胞 (Annexin V+ /PI-) 和晚期凋亡細胞的百分比 (Annexin V+ /PI+); e. 通過 BODIPY™ 581/591 C11 探針測定評估用 Oxaliplatin 處理的對照和 NFS1 敲低 HCT116 細胞中的脂質 ROS 水平。

(右圖): a. 對照中可能發生凋亡或壞死性凋亡的 YP1+細胞(綠色)和可能發生凋亡、壞死性凋亡、細胞焦亡或鐵死亡的 PI+ 細胞(紅色)以及用 Oxaliplatin 處理的 NFS1 敲低 DLD1 細胞。底部顯示為明場; b. 對 (a) 中的 YP1+ 和 PI+ 細胞進行定量; c. 使用膜聯蛋白 V/PI 染色進行流式細胞術分析,評估對照和用 PBS 或 Oxaliplatin 處理的和 NFS1 敲除 HCT116 中活細胞 (Annexin V-/PI-)、早期凋亡細胞 (Annexin V+/PI-) 和晚期凋亡細胞 (Annexin V+/PI+) 的百分比; d. (c)中活細胞 (Annexin V-/PI-)、早期凋亡細胞 (Annexin V+/PI-) 和晚期凋亡細胞 (Annexin V+/PI+) 的定量; e. 使用 BODIPYTM 581/591 C11 探針測定法評估Oxaliplati 處理的對照細胞和 NFS1 敲低 DLD1 細胞中的脂質 ROS; F. 本研究中用于 ROS/脂質 ROS 分析的策略。


外,作者評估了 Oxaliplatin 治療下 NFS1 缺陷誘導 PANoptosis 的具體機制。總之,Oxaliplatin 介導的氧化應激可增強 NFS1 的絲氨酸磷酸化水平,并且 NFS1 以 S293 磷酸化依賴性方式阻止 Oxaliplatin 治療下 PANoptosis 的激活。


本期小 M 為大家介紹了細胞死亡的新姿勢:泛凋亡 (PANopotosis),一種炎癥性細胞程序死亡途徑。三種重要的泛凋亡小體 ZBP1-PANoptosomes、AIM2-PANoptosomes 和 RIPK1-PANoptosomes 在其中發揮重要的調節作用,此外,小 M 為大家介紹了泛凋亡的檢測指標,并通過文獻案例進一步詳述。希望大家能夠有所收獲喔~


Oxaliplatin

Oxaliplatin 是一種 DNA 合成 抑制劑。Oxaliplatin 會導致 DNA 交聯損傷,阻止 DNA 復制和轉錄并導致細胞死亡。Oxaliplatin 以時間依賴方式抑制人黑色素瘤細胞系 C32 和 G361,IC50 值分別為 0.98 μM 和 0.14 μM。Oxaliplatin 可以誘導細胞自噬 (autophagy)。

Disulfiram

Disulfiram (Tetraethylthiuram disulfide) 是特異性的 ALDH1 抑制劑,對酒精具有急性敏感性。Disulfiram 有效抑制人體和小鼠細胞中脂質體中的 GSDMD 孔形成,炎性體介導的細胞凋亡和 IL-1β 分泌。Disulfiram + Cu2+ 可增加細胞內 ROS 水平,引發卵巢癌干細胞凋亡。

Daurisoline 

Daurisoline 是一個 hERG 抑制劑,也是一種自噬抑制劑。

Z-VAD-FMK

Z-VAD-FMK (Z-VAD(OH)-FMK) 是一種 pan caspase 抑制劑。Z-VAD-FMK 不抑制泛素 C 末端水解酶 L1 (UCHL1) 活性,即使濃度高達 440 μM。

Necrostatin-1

Necrostatin-1 (Nec-1) 是一種有效的能透過血腦屏障的壞死性凋亡 (necroptosis) 抑制劑,在 Jurkat 細胞中的 EC50 為 490 nM。Necrostatin-1 抑制 RIP1 激酶 (EC50=182 nM) 。Necrostatin-1 (Nec-1) 也是一種 (IDO) 抑制劑。

 
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參考文獻:
[1] Wang Y, et al. From pyroptosis, apoptosis and necroptosis to PANoptosis: A mechanistic compendium of programmed cell death pathways. Comput Struct Biotechnol J. 2021 Aug 3;19:4641-4657. 
[2] Malireddi RKS, et al. ZBP1 and TAK1: Master Regulators of NLRP3 Inflammasome/Pyroptosis, Apoptosis, and Necroptosis (PAN-optosis). Front Cell Infect Microbiol. 2019 Nov 26;9:406. 
[3] Zhu P, et al. Advances in mechanism and regulation of PANoptosis: Prospects in disease treatment. Front Immunol. 2023 Feb 9;14:1120034. 
[4] Pengyue Zhao, et al. Research progress on the role of PANoptosis in human diseases. August 2022Zhonghua Yi Xue Za Zhi 102(32):2549-2554. 
[5] Christgen S, et al. Identification of the PANoptosome: A Molecular Platform Triggering Pyroptosis, Apoptosis, and Necroptosis (PANoptosis). Front Cell Infect Microbiol. 2020 May 29;10:237.  
[6] Samir P, et al. The PANoptosome: A Deadly Protein Complex Driving Pyroptosis, Apoptosis, and Necroptosis (PANoptosis). Front Cell Infect Microbiol. 2020 Jun 3;10:238. 
[7] Gullett JM, et al. It's All in the PAN: Crosstalk, Plasticity, Redundancies, Switches, and Interconnectedness Encompassed by PANoptosis Underlying the Totality of Cell Death-Associated Biological Effects. Cells. 2022 Apr 29;11(9):1495. 
[8] Zheng M, et al. Newly Identified Function of Caspase-6 in ZBP1-mediated Innate Immune Responses, NLRP3 Inflammasome Activation, PANoptosis, and Host Defense. J Cell Immunol. 2020;2(6):341-347. 
[9] Zheng M, et al. The regulation of the ZBP1-NLRP3 inflammasome and its implications in pyroptosis, apoptosis, and necroptosis (PANoptosis). Immunol Rev. 2020 Sep;297(1):26-38. 
[10] Lee S, et al. AIM2 forms a complex with pyrin and ZBP1 to drive PANoptosis and host defence. Nature. 2021 Sep;597(7876):415-419. 
[11] Lin JF, et al. Phosphorylated NFS1 weakens oxaliplatin-based chemosensitivity of colorectal cancer by preventing PANoptosis. Signal Transduct Target Ther. 2022 Feb 28;7(1):54.  
發布者:上海皓元生物醫藥科技有限公司
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