1. 多肽純度和多肽含量的區別     
在我們使用多肽的過程中，我們經常會遇到多肽純度和多肽含量這兩個指標，而很多小伙伴可能會有這樣的疑問，為什么我們的多肽純度是95%，但是肽含量卻只有80%呢？因為，這個是兩個完全不同的概念。

多肽純度：多肽的純度是指使用HPLC分析法在214nm(214nm是肽鏈的吸收波長)處檢測到的目標多肽的含量；

多肽含量：是指樣品中肽類物質相對于非肽類物質所占的百分比；
多肽的純度是指使用HPLC分析法在214nm(214nm是肽鏈的吸收波長)處檢測到的目標多肽的含量；除了目標多肽外，HPLC還可以檢測到的雜質包括：缺失序列（缺失了一個或多個氨基酸殘基的靶序列），截斷序列（加保護過程中產生的序列）以及脫保護不完全序列（產生于整個合成過程或最后的裂解過程）等；但是，HPLC檢測不到水和殘留的鹽份如三氟乙酸鹽，醋酸鹽等，而在多肽合成過程中，多肽是通過三氟乙酸將肽序從樹脂上切割下來的，而且在純化過程中也會產生少量的TFA，因此，多肽游離的氨基末端和其他側鏈如Arg、Lys、His都可生成少量TFA雜質；還有一個就是水分，多肽通常采用凍干法脫水，即使如此，水也會因共價結合的能力不同而不同程度地存在著，因此，通常交付的多肽中，通常都含有TFA鹽和微量的水分，而這些都是HPLC檢測不出來的，因此，導致了肽含量和肽純度的不同。

我們知道，多肽純度是用HPLC分析法檢測得到的，那么肽含量又是如何檢測的呢？通常，肽含量通過氨基酸組分分析或紫外分光法測定的。這個信息主要是在一些對肽的濃度很敏感的實驗中，對計算肽的濃度是很重要的。

2. DMSO在多肽溶解中的使用及細胞毒性耐受建議
在我們溶解多肽的時候，經常會遇到一些疏水性序列，這就導致了多肽很難以我們想要的濃度溶解于水中，這個時候，我們可以考慮使用DMSO。

DMSO（二甲基亞砜）是一種含硫有機化合物，分子式為（CH3)2SO，常溫下為無色無臭的透明液體。DMSO作為冷凍保護劑經常應用于細胞庫。在細胞冷凍過程中，DMSO可防止胞內/胞外晶體的形成，其工作濃度為10%。DMSO通常可與鹽或血清白蛋白結合。

疏水性多肽可以很容易地溶解在DMSO中。但DMSO可增加細胞的通透性，若多肽溶解于DMSO中則會對細胞產生毒性作用。高濃度的DMSO絕不可應用于細胞培養中。這個時候，我們可以考慮控制溶液中DMSO的溶度。通常，濃度為5%的DMSO即可讓細胞膜溶解。大多數細胞株可以容忍0.5% DMSO，少許可以容忍1%的濃度，而不表現出嚴重的細胞毒性。然而原代細胞培養對其更敏感。所以如果是用原代細胞做劑量/反應曲線(可行性)，其濃度應低于0.1%。

下面是我們對于細胞對DMSO毒性耐受性的一些經驗：
          • 對幾乎所有的細胞來說，濃度為0.1%DMSO是安全的。
          • 廣泛被用于細胞培養的DMSO終濃度為0.5%，不會引起細胞毒性。
          • 雖然對部份細胞來說，1%DMSO也不會產生細胞毒性，但我們推薦0.5%。
          • 也有5%DMSO成功地應用于某些細胞的案例。
          • 始終保持終濃度在0.5%，但儲存時可200倍高濃度溶于100%的DMSO中。

對于某些疏水性非常高的多肽，可先嘗試將其溶解在少量的DMSO(30-50ul,100%)中，然后慢慢 (一滴一滴地)將其添加到不斷攪拌的水溶液如PBS或其他想要的緩沖液中，直至理想濃度。如果滴加過程中，肽溶液開始變渾濁，說明已經達到了溶解極限。另外，還可以嘗試使用超聲波幫助多肽溶解。