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細胞凍存復蘇原則-慢凍快融操作與演示

瀏覽次數:9500 發布日期:2020-10-10  來源:本站 僅供參考,謝絕轉載,否則責任自負

培養細胞時為何要凍存一定數量的細胞?

有何意義?

細胞凍存的意義:

細胞凍存是細胞保存的主要方法之一。利用凍存技術將細胞置于-196℃液氮中低溫保存,可以使細胞暫時脫離生長狀態并將其細胞特性保存起來,這樣在需要的時候再復蘇細胞用于實驗。而且適度地保存一定量的細胞,可以防止因正在培養的細胞被污染或其它意外事件而使細胞丟種,起到了細胞保種的作用。 

△  細胞培養過程

若直接凍存細胞,不加任何試劑時,細胞內和外環境中的水都會形成冰晶,能導致細胞內發生機械損傷、電解質升高、滲透壓改變、脫水、pH改變、蛋白變性等,能引起細胞死亡。

如向培養液加入保護劑,可使冰點降低。在緩慢的凍結條件下,能使細胞內水份在凍結前透出細胞。貯存在-130℃以下的低溫中能減少冰晶的形成。細胞復蘇時速度要快,使之迅速通過細胞最易受損的-5~0℃,細胞仍能生長,活力受損不大。目前常用的保護劑為二甲亞砜(DMSO)和甘油,DMSO對與細胞的毒性根據濃度確定,甘油對細胞無毒性,兩者分子量小,溶解度大,易穿透細胞。

△  對比圖

細胞凍存復蘇遵循的原則是:慢凍快融

慢凍大家可參考之前的文章:細胞凍存的那些事兒~

今天我們來聊聊~  細胞復蘇時需要注意的那些事兒~

細胞復蘇的原則:

快速融化

必須將凍存在-196℃液氮中的細胞快速融化至37℃,使細胞外凍存時的冰晶迅速融化,避免冰晶緩慢融化時進入細胞形成再結晶,對細胞造成損害。

復蘇步驟

一. 實驗前準備:

  • 將水浴鍋預熱至37℃。

  • 細胞實驗室進行常規消毒,用75%酒精擦拭并且使用紫外線照射40min的超凈工作臺臺面。

  • 在超凈工作臺中按次序擺放好消過毒的離心管、吸管、培養瓶等。

二.取出凍存管:

  • 根據細胞凍存記錄按標簽找到所需細胞的編號。

  • 從液氮罐中取出細胞盒,取出所需的細胞,同時核對管外的編號。

三.迅速解凍:

  • 迅速將凍存管投入到已經預熱的水浴鍋中解凍,并要不斷地搖動,使管中的液體迅速融化。

  • 約1-2min后凍存管內液體完全溶解,取出用酒精棉球擦拭凍存管的外壁,再拿入超凈臺內。

四.平衡離心:

  • 用架盤天平平衡后,放入離心機中1000r/min,離心5min。

五.制備細胞懸液:

  • 吸棄上清液。

  • 向離心管內加入10ml預熱的培養液,吹打制成細胞懸液。

  • 用培養液懸液混懸沉淀細胞,調整細胞濃度,放培養箱中培養。

六.細胞計數:

  • 細胞濃度以5×105/ml為宜。

七.培養細胞:

  • 將符合細胞計數要求的細胞懸液分裝入培養瓶內,將培養瓶放入37℃,5%CO2的培養箱內2-4小時(或者24-48小時)后換液繼續培養,換液的時間由細胞情況而定。

八. 記錄復蘇日期:

細胞凍存和復蘇是細胞培養技術里面最容易出問題的部分,因此必須注意以下幾點~

  • 注意無菌操作。

  • 取細胞的過程中可能會接觸液氮,一定注意帶好防凍手套,護目鏡。

  • 此項尤為重要,如果凍存管密封不嚴,細胞凍存管可能漏入液氮,解凍時,在水浴中搖晃,凍存管中的氣溫急劇上升,可導致爆炸,所以,一定要戴保護眼鏡和手套,復蘇過程中應蓋上恒溫水浴鍋的蓋。

  • 應在1-2min內使凍存液完全融化。如果復溫速度太慢,則會造成細胞損傷。另外,細胞復蘇后的操作最好在4℃冰浴中進行,以減少冷凍保護劑對細胞的毒性。

  • 細胞復蘇過程中,升溫的速率要大,把從液氮取出的細胞在最短的時間內放入水浴鍋。

  • 離心前須加入少量培養液。細胞解凍后二甲基亞砜濃度較高,注意加入少量培養液可稀釋其濃度,以減少對細胞的損傷。

  • 細胞貼壁少的問題:教科書中說明凍存細胞解凍時1ml細胞液要加10ml-15ml培養液,經驗總結,培養基越少細胞越容易貼附。

  • 復蘇細胞分裝的問題:復蘇1管細胞一般根據情況可分裝到1-2只培養瓶中,分裝過多,細胞濃度過低,不利于細胞的貼壁。

  • 加培養基的量放入問題:這個量的多少的把握主要涉及到的問題是DMSO的濃度,從如果加培養基的太少,DMSO的濃度就會比較大,就會影響細胞生長,從以前的資料來看,DMSO的濃度在小于0.5%的時候對一般細胞沒有什么影響。還有一個說法是1%。所以如果凍存液的濃度是10%DMSO,那么加10ml以上的培養基就恰好稀釋到了無害濃度。    

     

初學者最易犯的錯誤:

  • 水浴鍋未預熱或者未預熱到37℃直接融化。

  • 水浴鍋內凍存管太多,導致傳熱不佳,使融化時間延長。

  • 離心前忘記平衡,導致離心機損壞和細胞丟失。

  • 一次復蘇細胞種類過多,忘記更換吸頭和吸管,導致細胞交叉污染。

 解凍后的細胞要用和以前一樣的培養液和血清。因為每一種細胞都有自己特定的,并且已經熟悉了的生長環境。突然使用不一樣的培養液和血清,會造成細胞生長不良,甚至死亡,像水土不服一樣。

結果分析:

判斷細胞復蘇成功與否,需要看復蘇后細胞貼壁率及細胞存活率(細胞存活率將凍存管內剩余的細胞,用臺盼藍染色法檢測復蘇細胞的存活率。呈藍色的細胞為死細胞,活細胞不著色。用細胞計數板和計數器計數細胞,得出細胞存活率)。如果復蘇后95%以上的細胞貼壁,而且細胞的活性好,這就說明細胞復蘇的過程沒有問題。復蘇的細胞恢復到正常生長,達到正常的生長特性(比如細胞群體倍增時間等)后要再凍存以補充細胞儲存數量。

 

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