1．離心（Centrifuge）：高速離心 (10, 000 rpm) 20-30 秒，或低速離心 (2, 000 rpm) 5 分鐘。

2．溶解（Reconstitution）：用去離子水或其它緩沖液（根據說明書要求進行選擇）溶解至說明書要求的濃度 (一般為 0.1-1.0 mg/ml)。溶解時不可振蕩，避免因化學鍵的斷裂造成蛋白失活，可加入適當的溶劑輕搖并靜置一段時間，待細胞因子完全溶解后使用。溶劑的選擇：

 1）要求用去離子水溶解的產品，務必不可用鹽溶液，避免過高的鹽濃度造成蛋白不可逆的析出；

 2) 要求用鹽溶液溶解的產品，請依照說明書上的濃度，同樣也是為了避免過高的鹽濃度。

3．分裝和貯存（Aliquot and Storage）：蛋白溶解后可根據自己的實驗需要進一步稀釋成工作液，稀釋可用RPMI 1640、DMEM 或PBS 等溶液。工作液在4℃可保存1 周，如需長期保存，最好在稀釋液中加入10%的FCS（小牛或胎牛血清）或0.1 %的BSA（牛血清白蛋白）或5% HAS（人血清白蛋白）來穩定蛋白，然后需分裝凍存于-20℃ （注意：不可凍存于-50℃以下）。分裝時每管中工作液的體積最好是一次實驗的用量，以實現每次實驗用完一支工作液，避免反復凍融引起蛋白活性的降低。

細胞因子量極微，所以嚴謹的操作是必需的，任何不適當的溶解都會造成實驗的失敗，造成大量的浪費。請謹慎操作！