多聚集鏈反應（polymerase chain reaction,PCR）技術發明至今已近20年了，在這期間技術得到了不斷的發展，近年來出現的實時熒光定量PCR（real-time quantitative PCR）技術實現了PCR從定性到定量的飛躍，它以其特異性強、靈敏度高、重復性好、定量準確、速度快、全封閉反應等優點成為了分子生物學研究中的重要工 具，本文就此技術及其應用做一綜述。

1 實時熒光定量PCR技術的方法學

1.1 原理 所謂real-time Q-PCR技術，是指在PCR反應體系中加入熒光基團，利用熒光信號累積實時監測整個PCR進程，最后通過標準曲線對未知模板進行定量分析的方法。在 real-time 技術的發展過程中，兩個重要的發現起著關鍵的作用：（1）在90年代早期，Taq DNA多聚酶的5′核酸外切酶活性的發現，它能降解特異性熒光記探針，因此使得間接的檢測PCR產物成為可能。（2）此后熒光雙標記探針的運用使在一密閉 的反應管中能實時地監測反應全過程。這兩個發現的結合以及相應的儀器和試劑的商品化發展導致real-time Q-PCR方法在研究工作中的運用。

PCR反應過程中產生的DNA拷貝數是呈指數方式增加的，隨著反應循環數的增加，最終PCR反應不再以指數方式生成模板，從而進入平臺期。在傳統的PCR 中，常用凝膠電泳分離并用熒光染色來檢測PCR反應的最終擴增產物，因此用此終點法對PCR產物定量存在不可靠之處。在real-time Q-PCR中，對整個PCR反應擴增過程進行了實時的監測和連續地分析擴增相關的熒光信號，隨著反應時間的進行，監測到的熒光信號的變化可以繪制成一條曲 線。在PCR反應早期，產生熒光的水平不能與背景明顯地區別，而后熒光的產生進入指數期、線性期和最終的平臺期，因此可以在PCR反應處于指數期的某一點 上來檢測PCR產物的量，并且由此來推斷模板最初的含量。為了便于對所檢測樣本進行比較，在real-time Q-PCR反應的指數期，首先需設定一定熒光信號的域值，一般這個域值（threshold）是以PCR反應的前15個循環的熒光信號作為熒光本底信號 （baseline），熒光域值的缺省設置是3～15個循環的熒光信號的標準偏差的10倍。如果檢測到熒光信號超過域值被認為是真正的信號，它可用于定義 樣本的域值循環數（Ct）。Ct值的含義是：每個反應管內的熒光信號達到設定的域值時所經歷的循環數。研究表明，每個模板的Ct值與該模板的起始拷貝數的 對數存在線性關系，起始拷貝數越多，Ct值越小。利用已知起始拷貝數的標準品可作出標準曲線，因此只要獲得未知樣品的Ct值，即可從標準曲線上計算出該樣 品的起始拷貝數。

1.2 熒光化學 目前real-time Q-PCR所使用的熒光化學方法主要有五種，分別是：DNA結合染色，水解探針，分子信標，熒光標記引物，雜交探針。它們又可分為擴增序列特異和非特異的檢測兩大類。

擴增序列非特異性檢測方法的基礎是DNA結合的熒光分子，如SYBR green 1等熒光染料。Real-time Q-PCR發展早期就是運用這種最簡單的方法，在PCR反應體系中，加入過量SYBR green 1熒光染料，SYBR green 1熒光染料特異性地摻入DNA雙鏈后，發射熒光信號。熒光染料的優勢在于它能監測任何dsDNA序列的擴增，不需要探針的設計，使檢測方法變得簡便，同時 也降低了檢測的成本。然而正是由于熒光染料能和任何dsDNA結合，因此它也能與非特異的dsDNA（如引物二聚體）結合，使實驗容易產生假陽性信號。引 物二聚體的問題目前可以用帶有熔解曲線（melting curve）分析的軟件加以解決。

擴增序列特異性檢測方法是在PCR反應中利用標記熒光染料的基因特異寡核苷酸探針來檢測產物，它又可分為直接法和間接法。間接的方法就是利用水解探針的策 略。目前在real-time Q-PCR中最廣泛使用的TaqMan系統就是運用了這個原理。PCR擴增時在加入一對引物的同時加入一個特異性的熒光探針，該探針為一寡核苷酸，兩端分 別標記一個報告熒光基團和一個淬滅熒光基團，此時5′端熒光基團吸收能量后將能量轉移給臨近的3′端熒光淬滅基團（發生熒光共振能量轉移，FRET），因 此探針完整時，檢測不到該探針5′端熒光基團發出的熒光。但在PCR擴增中，溶液中的模板變性后低溫退火時，引物與探針同時與模板結合。在引物的介導下， 沿模板向前延伸至探針結合處，發生鏈的置換，Taq酶的5′-3′外切酶活性（此活性是雙鏈特異性的，游離的單鏈探針不受影響）將探針5′端連接的熒光基 團從探針上切割下來，游離于反應體系中，從而脫離3′端熒光淬滅基團的屏蔽，接受光刺激發出熒光信號，即每擴增一條DNA鏈，就有一個熒光分子形成，實現 了熒光信號的累積與PCR產物形成完全同步。



直接的方法指的是標記熒光的探針與擴增產物結合后即直接產生熒光，分子信標（molecular beacon）就屬于這一類，它本質上是一種標記熒光的發夾探針，當探針分子呈發夾結構時，結合在其兩端的熒光基團距離上接近，使得產生能量轉移效應，而 不發生熒光。當互補序列出現時，探針與DNA雜交，探針轉變成一個開放的結構，呈線性，報告熒光基團與淬滅熒光基團彼此在空間上產生足夠的分離，熒光基團 脫離了淬滅基團的影響，從而產生可被檢測到的熒光。熒光標記引物是從分子信標的概念變化而產生的一種聯合分子探針系統，它把熒光基團標記的發夾結構的序列 直接與PCR引物相結合，從而使熒光標記基團直接摻入PCR擴增產物中。目前主要有兩種：日出引物（sunrise primes）和蝎子引物（scorpion primes）。雜交探針（hybridization probe）使用兩個特異的探針，其中上游的探針的3′端標記有供體熒光素（donor），而下游的探針的5′端標記有受體熒光素（acceptor）。 在PCR中模板退火階段，兩探針同時與擴增產物雜交，并形成頭尾結合的形式，使供體和受體熒光素距離非常接近，兩者產生熒光共振能量轉移（FRET，此作 用與上述水解探針的方式相反），使得受體熒光基團發出熒光；當兩探針處于游離狀態時，無熒光產生。由于反應中運用了兩個探針，因此增加了方法的特異性，另 外也可利用熒光寡核苷酸熔解曲線（melting curve）對與寡核苷酸探針結合的序列進行分析，從中獲取有用的信息。

1.3 定量方法 在real-time Q-PCR中，模板定量有兩種策略；相對定量和絕對定量。相對定量指的是在一定樣本中靶序列相對于另一參照樣本的量的變化。絕對定量指的是用已知的標準曲線來推算未知的樣本的量。

1.3.1 標準曲線的法的相對定量 由于在此方法中量的表達是相對于某個參照物的量而言的，因此相對定量的標準曲線就比較容易制備，對于所用的標準品只要知道其相對稀釋度即可。在整個實驗中 樣本的靶序列的量來自于標準曲線，最終必須除以參照物的量，即參照物是1*的樣本，其它的樣本為參照物量的n倍。在實驗中為了標準化加入反應體系的RNA 或DNA的量，往往在反應中同時擴增一內源控制物，如在基因表達研究中，內源控制物常為一些管家基因（如beta-actin,3-磷酸甘油醛脫氫酶 GAPDH等）。

1.3.2 比較CT法的相對定量 比較CT法與標準曲線法的相對定量的不同之處于在于其運用了數學公式來計算相對量，前提是假設每個循環增加一倍的產物數量，在PCR反應的指數期得到CT 值來反應起始模板的量，一個循環（CT=1）的不同相當于起始模板數2倍的差異。但是此方法是以靶基因和內源控制物的擴增效率基本一致為前提的，效率的偏 移將影響實際拷貝數的估計。

1.3.3 標準曲線法的絕對定量 此方法與標準曲線法的相對定量的不同之處在于其標準品的量是預先可知的。質粒DNA和體外轉入的RNA常作為絕對定量標準品的制備之用。標準品的量可根據260nm的吸光度值并用DNA或RNA的分子量來轉換成其拷貝數來確定。

2 實時熒光定量PCR技術的應用

Ｒeal-time Q-PCR的應用范圍很廣泛，包括mRNA表達的研究、DNA拷貝數的檢測、單核苷酸多態性（SNPs）的測定等。以下就目前real-time Q-PCR在易位基因的檢測，細胞因子的表達分析，腫瘤耐藥基因表達的研究以及病毒感染的定量監測中的應用作一概述。

2.1 微小殘留病變的檢測　腫瘤疾病尤其是血液的惡性腫瘤常伴有特異性基因的易位，這種易位往往可以作為監測臨床治療效果的一種腫瘤標志。雖然在過去的幾十年里 治療方案的改進已大大地延長了病人的生存期，但是緩解期的病人仍存在復發的危險性。因此微小殘留病變（MRD）的檢測對于進一步調整治療方案是至關重要 的。Real-time Q-PCR的應用正成為檢測腫瘤微小殘留分子標志的一種必備的研究工具。通過對腫瘤融合基因的定量測定能指導臨床對病人實行個體化的治療。急性粒細胞性白 血�。ˋML）最常見的染色體異常是交互易位t(8；21) (q 22；q22)，在這易位中，AML-1轉錄因子基因和8號染色體的MTG8基因發生融合，致使正常的AML-1轉錄調控受到影響，這可能是白血病的病 因。目前的研究證明用real-time Q-PCR來檢測融合基因有助于對這些病人的MRD進行定量，其作為預后的指標或對治療方案的評估是有價值的。同樣的方法也被用于定量其它的易位融合基因 水平，如慢性粒細胞性白血�。–ML）的BCR-ABL融合基因；急性淋巴細胞性白血�。ˋLL）的白血病特異的TEL-AML1融合基因；濾泡狀淋巴瘤 （FL）的染色體易位t(14;18)(q32;q21)和bcl-2重排等。許多研究都在很大程度上受益于real-time Q-PCR方法的應用，隨著技術的發展，Real-time Q-PCR的運用將不斷地擴大。




2.2 細胞因子的表達分析 細胞因子是調節蛋白，它通過調節免疫反應（包括淋巴細胞活化、增殖、分化、生存和凋亡）在免疫系統中起著核心作用。許多不同類型的細胞都能分泌這種低分子 量的蛋白質，其中包括淋巴細胞、抗原遞呈細胞、單核細胞、內皮細胞和成纖維細胞。細胞因子可被分為不同的組；白介素（IL-1～IL-23），干擾素 （IFN-α，IFN-γ等），集落刺激因子（CSF），腫瘤壞死因子（TNF），腫瘤生長因子（TGF-β等）和化學因子（MCP-1，MIP-1 等）。為了闡明在許多炎癥反應，自身免疫性疾病和器官移植排異中的免疫致病途徑，細胞因子mRNA表達譜的可靠定量是很重要的。盡管被檢樣本中細胞因子含 量往往極低，然而real-time反轉靈PCR（RT-PCR）以其高敏感性和準確性在細胞因子的定量中越來越受到青睞。

2.3 腫瘤耐藥基因表達的研究 對化療藥物的耐藥是治療腫瘤病人的主要障礙。由于耐藥限制了許多腫瘤的成功治療，因此研究腫瘤細胞對耐藥機制就變得十分重要。目前研究中發現主要的耐藥機 制有：ATP結合盒基因超家族（ATP-binding cassette superfamily）的膜轉運蛋白介導的耐藥，這些蛋白包括：MDR-1基因編碼的P-糖蛋白（P-gp），多藥耐藥相關蛋白（MRP），肺耐藥相關 蛋白（LRP），乳腺癌耐藥蛋白（BCRP）等；酶介導的耐藥，包括拓撲導構酶（Topo），谷胱甘肽（GSH）及谷胱甘肽-S-轉移酶（GST），蛋白 激酶C（PKC），脫氧胞嘧啶核苷激酶（deoxycytidine kinase）等，凋亡基因介導的耐藥，如bcl-2家族，p53基因，c-myc等。多藥耐藥（MDR）是多因素，多種機制共同作用的結果。real- time反轉錄PCR（RT-PCR）是了解腫瘤耐藥，指導臨床治療策略的有用手段，它能觀測用藥前后及復發時腫瘤細胞的耐藥基因mRNA表達變化，從而 及時調整治療方案和評價疾病的預后。

2.4 病毒感染的定量監測 擴增技術的發展使得對病毒的定性或定量檢測的能力隨之提高，也使研究病毒的負荷和疾病進展的關系成為可能。Real-time Q-PCR是主要被運用于科研和診斷領域的擴增技術，它不僅能對病毒定性，而且由于其實驗的批間和批內差異小，重復性好，因此能方便、快速、靈敏、準確地 定量病毒DNA或RNA的序列，更重要的是從中可以動態地研究在整個病程中潛在病毒的復活或持續，從而使臨床醫生和病毒學家能檢測臨床的變化，如抗病毒治 療的效果，耐藥變異的出現等。目前運用較多的是在器官移值中對使用免疫抑制劑的病人用Real-time Q-PCR來定量測定CMV感染。研究表明在骨髓移植的病人中用Real-time Q-PCR檢測CMV感染比傳統的pp65抗原試驗更敏感，抗CMV藥物治療能使血中的病毒含量下降，Real-time Q-PCR對于快速定量骨移植病人的CMV感染和監測CMV復活是一個有用的工具。

3 存在的問題及應用前景

在real-time Q-PCR技術中，無論是相對定量還是標準曲線定量方法仍存在一些PCR定量方法均有的問題有待解決。在標準曲線定量中，標準品的制備是一個必不可少的過 程。目前由于無一統一標準，各個實驗室所用的生成標準曲線的樣品各不相同，致使實驗結果缺乏可比性。此外，用real-time Q-PCR來研究mRNA時，受到不同RNA樣本存在不同的逆轉錄（RT）效率的限制。在相對定量中，其前提是假設內源控制物不受實驗條件的影響的，合理 地選擇合適的不受實驗條件影響的內源控制物也是實驗結果可靠與否的關鍵。另外，與傳統的PCR技術相比，Real-time Q-PCR的不足之處是：（1）由于運用了封閉的檢測，減少了擴增后電泳的檢測步驟，因此也就不能監測擴增產物的大�。唬�2）因為熒光素種類以及檢測光源 的局限性，從而相對地限制了real-time Q-PCR的復合式（multiplex）檢測的應用能力；（3）目前real-time Q-PCR實驗成本比較高，從而也限制了其廣泛的應用。

隨著技術不斷改進和發展。目前real-time Q-PCR已成為科研的主要工具，該技術未來的應用前景是令人鼓舞的，一方面real-time Q-PCR技術與其它分子生物學技術相結合使定量極微量的基因表達或DNA拷貝數成為可能。另一方面熒光標記核酸化學技術和寡核苷酸探針雜交技術的發展以 及real-time Q-PCR技術的應用，使定量PCR技術有一個足夠的基礎為廣大臨床診斷實驗室所接受，將有助于臨床醫生對疾病的診斷和治療。

4 結 語

Real-time Q-PCR的發展使得研究人員又多了一種比較簡單且自動化的手段去研究許多重要的基礎課題。雖然此技術仍存在一些不足需要改進，但是它為real- time Q-PCR在常規診斷檢測中的運用打下了良好的基礎。Real-time Q-PCR將成為未來分子生物學實驗室必備的研究工具。