今天是第七個全國科技工作者日（5月30日），神舟十六號也于上午發射升空，開啟探索太空新征程。聽說此前神十六發布會間隙，作為乘組成員之一的桂海潮還不忘cue自己的學生交論文，對此，有網友戲稱“天地連線開組會安排上了！”

如果導師出差還要堅持開組會，屏幕前的你會不會也為這樣的師生情所感動（這里要不要加個狗頭emoji）然后開始瘋狂趕實驗進度，手里的細胞挑得飛起，以免導師出其不意問上一句“基因該敲的都敲完了吧？”

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說起基因敲除，很多小伙伴大概總是為課題的這個問題那個問題發愁。眼看年中將近，我們貼心為大家準備了一系列專場活動，本期放出的618分會場第一波福利中，除互動禮品外，還有熱門活動「全基因組敲除細胞構建計劃」，交付單克隆純合子，低至6980元，掃碼即可快速查詢！
 

KO細胞的常見問題解答 

• 往期回顧

Q1: 基因敲除的sgRNA如何設計？
Q2: 如何避免脫靶效應？

• 本期內容

Q3：CRISPR-Cas9系統的活性檢測方法有哪些?
通常我們都是采用各個設計網站預測，得到我們的gRNA，那如何能夠快速、準確的驗證CRISPR-Cas9系統是否能發揮作用呢？

• 熒光活性檢測法。在Cas9和gRNA的作用下，靶點位置的雙鏈DNA會被切割形成DSB，細胞通過同源重組形成有活性的熒光蛋白，可通過流式細胞儀來檢測熒光強度是否增強，以此來判斷Cas9及gRNA的活性及敲除效率。
• 錯配酶法。對修飾后的靶序列進行PCR擴增過程中，會形成含有錯配的DNA雙鏈，將經過錯配酶切割后的產物進行凝膠電泳，檢測CRISPR-Cas9系統的切割活性。
• 套峰檢測法。對修飾后的靶序列進行PCR并測序，通過分析Spacer區域套峰情況來分析CRISPR-Cas9系統的活性。

Q4：實現基因功能缺失，我要做敲低（RNAi）還是敲除？

• 當敲除可能會導致細胞增殖非常緩慢或停止生長，或在細胞轉染后的cell pool階段檢測效率呈顯著下降趨勢，即可判定可能出現敲除致死的情況，建議用RNAi。
• 由于存在部分強功能蛋白，即使表達下調了，仍然有較強的功能，如果RNAi始終做不出表型，但從有關信息推測這個基因很大可能性會出表型，建議做KO；另外，研究的目的基因處于非轉錄區域，或者目的基因有很強的轉錄效率，也是無法用RNAi進行有效干擾的，則建議做KO，且KO細胞更適合進行回補實驗。
• 最后，敲低跟敲除不是二選一的關系。當我們用RNAi做了基因敲低，觀察到細胞表型的變化后，仍然可以進一步做敲除，讓實驗結論更加有說服性。

你是否還想了解更多KO細胞構建的知識點，如：

• 常見的KO細胞技術手段及其對應的技術原理、技術特點等
• 移碼突變和片段敲除哪個能更好地破壞目的蛋白的功能結構域？

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