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超維景微型化三光子顯微鏡SUPERNOVA-3000隆重上市

瀏覽次數(shù):2326 發(fā)布日期:2023-4-4  來源:超維景生物
新品發(fā)布 |微型化三光子顯微鏡SUPERNOVA-3000隆重上市
 
大腦深部區(qū)域與基本生命功能密切相關,在各種神經(jīng)疾病中均觀察到深部大腦的結(jié)構(gòu)和功能異常,例如帕金森病、阿爾茨海默癥、抑郁癥和強迫癥等。但在嚙齒類動物研究模型中,由于神經(jīng)組織,特別是胼胝體,具有對光的高散射光學特性。如何突破成像深度極限,在自由活動動物上對距離腦表層深度>1 mm的結(jié)構(gòu)進行成像存在極大的挑戰(zhàn)。三光子成像技術的出現(xiàn)將成像深度大大擴展至1500 μm,為非侵入式深腦成像帶來了曙光。
 
北京大學研發(fā)團隊最新發(fā)文Nature Methods

圖1.文章截圖Zhao, et al. (2023). Miniature three-photon microscopy maximized for scattered fluorescence collection. Nat Methods. 10.1038/s41592-023-01777-3.[1]
 
解析腦連接圖譜和功能動態(tài)圖譜是我國和世界多國腦計劃的一個重點研究方向,但傳統(tǒng)的多光子顯微鏡進行常規(guī)腦成像通常需要將動物的頭部固定在臺式顯微鏡上,這嚴重限制了模式動物的自由生理狀態(tài)。為此需要打造自由行為動物佩戴式顯微成像類研究工具。

※ 2017年,北京大學程和平院士團隊成功研制第一代 2.2g微型化雙光子顯微鏡,獲取了小鼠在自由行為過程中大腦皮層神經(jīng)元和神經(jīng)突觸活動的動態(tài)圖像。
※ 2021年,該團隊的第二代微型化雙光子顯微鏡將成像視野擴大了 7.8 倍,同時具備獲取大腦皮層上千個神經(jīng)元功能信號的三維成像能力。
※2023年2月,北京大學程和平-王愛民團隊再一次實現(xiàn)技術突破,將微型化探頭與三光子成像技術結(jié)合,并在 Nature Methods 發(fā)表文章 “Miniature three-photon microscopy maximized for scattered fluorescence collection  ”。文章報道了僅2.17g的微型化三光子顯微鏡,首次實現(xiàn)對自由行為小鼠的大腦全皮層和海馬神經(jīng)元功能成像,為揭示大腦深部結(jié)構(gòu)中的神經(jīng)機制開啟了新的研究范式。


圖2. 小鼠佩戴微型化三光子顯微鏡探頭
 
SUPERNOVA-3000應運而生
 
依托專業(yè)的研發(fā)團隊和深厚的技術積淀,SUPERNOVA-3000應運而生。SUPERNOVA-3000通過高度集成化、系統(tǒng)化、工業(yè)化設計將微型化探頭的重量控制在2.2g。搭配獨有的光學設計突破微型化顯微鏡的成像深度極限,在全球范圍內(nèi)開創(chuàng)性構(gòu)建自由行為動物深腦成像“新范式”。
 
自由行為動物非侵入式深腦成像解決方案

Go deeper
利用五階非線性效應以及穿透力更強的激發(fā)熒光(1300 nm),一舉突破此前微型化多光子顯微鏡的成像深度極限。


圖3. 熒光激發(fā)示意圖


圖4. 小鼠腦組織中散射長度的光譜分布[2]
 
顯微鏡激發(fā)光路可以穿透整個小鼠大腦皮層和胼胝體,實現(xiàn)對小鼠海馬CA1亞區(qū)形態(tài)及功能的直接觀測記錄。神經(jīng)元鈣信號最大成像深度可達1.2 mm,血管成像深度可達1.4 mm。
 
圖5. 微型三光子顯微鏡記錄小鼠大腦皮層L1-L6和海馬CA1的結(jié)構(gòu)和功能動態(tài)。CC:胼胝體。綠色代表GCaMP6s標記的神經(jīng)元熒光鈣信號,洋紅色代表硬腦膜、微血管和腦白質(zhì)界面的三次諧波信號。
 
More Freedom
●2.2g新型微型化探頭
微型化探頭通過新型內(nèi)嵌阿貝聚光鏡復合式光學構(gòu)型,體積僅2 × 1.6 × 0.9 cm3,實現(xiàn)飛秒激光脈沖無畸變傳輸、高質(zhì)量激光匯聚、高效率熒光收集和激發(fā)。開創(chuàng)性的將三光子光學組件高度集成在一個微型化探頭內(nèi)。同時外殼使用超輕金屬,重量僅2.2g既輕盈又堅固,搭配電動變焦模塊、定制光纖、光屏蔽GaAsP PMT,保證了對自由運動小鼠深腦神經(jīng)活動的高穩(wěn)定性、高分辨成像。

 
圖6. 小鼠佩戴微型化三光子探頭

●激光傳導光纖--空芯光子帶隙光纖
系列光纖均具有準單模傳輸、低損耗、低非線性、低色散、高激光器損傷閾值的特點。高效率傳輸1300 nm飛秒脈沖激光,將空間光路轉(zhuǎn)變?yōu)楣饫w傳輸,強抗彎折性能,使自由運動下觀察成為可能。


圖7. 空芯光子帶隙光纖截面和輸出光斑示意圖


圖8. 出口處激光脈沖時間剖面

Less damage
●非侵入式手術
深腦成像避免使用GRIN Lens,對小鼠大腦損傷更小,避免影響小鼠正常神經(jīng)生理狀態(tài)
無GRIN Lens,成本更低
手術便捷,成功率更高 

●超低光毒性
散射熒光增強收集系統(tǒng)——深腦超低功率成像
SUPERNOVA-3000創(chuàng)新的使用微型阿貝聚光鏡與無限遠物鏡密接提高散射光的收集效率,李斯特微型管鏡復用簡化結(jié)構(gòu),優(yōu)化光路設計,提高熒光收集效率的同時,保證了大視場分辨率?傮w上,散射熒光增強收集構(gòu)型使微型化顯微鏡的散射熒光收集效率實現(xiàn)了成倍的提升,實現(xiàn)了在超低成像功率下對自由運動小鼠大腦深部腦區(qū)神經(jīng)元活動進行實時監(jiān)測。


圖9. 散射熒光增強收集構(gòu)型

基于散射熒光增強收集構(gòu)型,實現(xiàn)全皮層鈣信號成像僅需幾個毫瓦,海馬鈣信號成像僅需要幾十毫瓦,大大低于組織損傷的安全閾值。因此,SUPERNOVA-3000可以長時間、不間斷連續(xù)觀測神經(jīng)元功能活動,且不產(chǎn)生明顯的光漂白與光損傷。


圖10. AAV-hSyn-GCaMP6s病毒注射小鼠大腦不同深度腦區(qū)超低功率鈣成像
 
生物應用

動物自由運動成像
●行為學實驗下的小鼠頂葉后皮質(zhì) L6(PPC L6)的神經(jīng)元鈣活動(成像深度650 μm)
微型化三光子顯微鏡可以搭配不同行為學實驗的深部腦區(qū)進行單細胞級的穩(wěn)定高時空分辨率成像,滿足實時監(jiān)測單個神經(jīng)元的活動,結(jié)構(gòu)變化以及不同功能神經(jīng)元分類等實驗需求。


圖11. 行為學實驗下小鼠大腦PPC L6的神經(jīng)元活動
 
●自由運動小鼠大腦海馬CA1亞區(qū)的神經(jīng)元鈣活動(成像深度1.2 mm)
安全激光功率下通過非侵入式手術對背側(cè)海馬CA1(深度達1.2 mm)的鈣活動進行成像,監(jiān)測神經(jīng)元的鈣活動軌跡,并與小鼠行為視頻進行同步。


圖12. 自由運動小鼠大腦海馬CA1亞區(qū)的神經(jīng)元活動
 
●長時程監(jiān)測自由運動小鼠大腦海馬CA1亞區(qū)的神經(jīng)元鈣活動(成像深度978 μm)
在8.35 Hz的成像速率下,進行100分鐘不間斷連續(xù)監(jiān)測采集自由運動小鼠大腦海馬CA1亞區(qū)神經(jīng)元活動,鈣信號瞬態(tài)特征無明顯變化(平均振幅,衰減時間常數(shù),SNR)


圖13. 100分鐘不間斷采集自由運動小鼠大腦海馬CA1亞區(qū)神經(jīng)元活動
 
小鼠大腦組織3D重構(gòu)
 
 
國際影響--Nature Methods 發(fā)表社評

圖14. 文章部分截圖Benjamin F. Grewe et al. Nat. Methods https://doi.org/10.1038/s41592-023-01808-z [3]
 
3月,Nature Methods期刊邀請Benjamin F. Grewe等領域?qū)<野l(fā)表在線社評文章Deep brain imaging on the move ,特別指出微型化三光子顯微鏡對于深腦成像的重要意義。三光子成像則將可到達的成像深度大大擴展至1500 μm。因此,在小鼠中,微型化三光子顯微鏡將直接實現(xiàn)對整個大腦皮層及下方區(qū)域,例如海馬CA1進行成像,同時保留完整的大腦皮層結(jié)構(gòu)投影。隨著微型化三光子顯微鏡SUPERNOVA-3000的出現(xiàn),神經(jīng)科學的研究人員將可實現(xiàn)對例如涉及紋狀體結(jié)構(gòu)的,大腦皮層及皮層下方腦區(qū)之間的神經(jīng)網(wǎng)絡進行深入研究
 

圖15. 微型化三光子顯微鏡SUPERNOVA-3000示意圖
 
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【參考文獻】
[1]Zhao, C., Chen, S., Zhang, L., Zhang, D., Wu, R., Hu, Y., Zeng, F., Li, Y., Wu, D., Yu, F., et al. (2023). Miniature three-photon microscopy maximized for scattered fluorescence collection. Nat Methods. 10.1038/s41592-023-01777-3.
[2]N. G. Horton, K. Wang, D. Kobat, C. G. Clark, F. W. Wise, C. B. Schaffer, and C. Xu, Nature Photonics 7, 205- 209 (2013)
[3]Lecoq, J.A., Boehringer, R., and Grewe, B.F. (2023). Deep brain imaging on the move. Nat Methods. 10.1038/s41592-023-01808-z.
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